Оценка фагоцитарного звена иммунитета
- Об аллергии
- Технология ImmunoCAP®
- Диагностика астмы
- Пищевая аллергия
- Ингаляционная аллергия
- Аллергия на насекомых
- Лекарственная аллергия
- Перекрестные аллергены
- Аллергия у детей
- Методики аллергодиагностики
- Анализы на аллергию
- Анализы на аллергию ЦЕНЫ
- Прайс лист другие виды диагностики
——————-
- О лаборатории, контакты
- Общая информация
- Для специалистов: методики в аллергологии
- Обзор современных методов диагностики аллергии in vitro
- Анализ методом ИммуноСАР в лаборатории ФидесЛаб
- Углубленный анализ непереносимости в лаборатории ФидесЛаб
- Инструкция на метод РВМ
- Лекарственная непереносимость
- Объем иммунограммы
- Оценка фагоцитарной активности нейтрофилов
- Панели аллергенов
- Спектр аллергенов (расширенный)
- Методика определения общего IgE
- Методика определения специфических IgG при аллергии
- Определение наиболее частых аллергенов
- Анализ крови на самые частые аллергены
- Как проехать
——————-
Оценка фагоцитарного звена системы иммунитета является неотъемлемым элементом оценки иммунного статуса, который нарушается при многих воспалительно-инфекционных заболеваниях. Для оценки фагоцитарного звена системы иммунитета используют исследование количества и функциональной активности нейтрофилов (реже моноцитов) крови.
Определяют:
- процент и общее число, морфологию нейтрофилов крови
- поглотительную активность нейтрофилов по поглощению частиц латекса, стафилококков, кандид
- вычисляют фагоцитарное число (среднее число поглощенных частиц)
- подсчитывают фагоцитарный индекс (процент нейтрофилов участвующих в фагоцитозе)
- метаболическую активность нейтрофилов по восстановлению нитросинего тетразолия (НСТ) в формазан
- хемотаксическую подвижность – по оценке подвижности к хемотаксическому веществу
- адгезивную активность – по прилипанию к поверхностям, а также выявляют молекулы адгезии с помощью моноклональных антител
- оценивают фенотип нейтрофилов – рецепторы и CD-антигены
- определяют переваривающую активность (фагоцитарный киллинг).
Важнейшими среди этих показателей являются поглотительная и переваривающая активность нейтрофилов, так как они прямо отражают их противоинфекционные возможности. При использовании для оценки переваривающей активности нейтрофилов бактерий трудно исследовать эту функцию. Основным методом оценки переваривания бактерий нейтрофилами является разрушение лейкоцитов, посев на питательную среду и подсчёт выросших колоний бактерий. Другой метод – оценка путём проточной цитометрии меченых бактерий или кандид. Хотя последний метод достаточно точен, но требует дорогостоящей аппаратуры, недоступной большинству лабораторий.
R. Lehrer и M. Cline заметили, что живые клетки Candida albicans не окрашиваются метиленовым синим, в то время как мёртвые клетки окрашиваются этим красителем. Это наблюдение позволило решить проблему учёта количественной характеристики киллинга дрожжевых клеток фагоцитами. В последующем J.S. Solomkin с соавторами разработали метод, позволяющий оценивать кинетику фагоцитоза, который не претерпел практически никаких изменений до наших дней, за исключением вариаций объёкта фагоцитоз, когда в качестве объекта используют, например, Saccharomices cerevisiae.
Нами разработан метод оценки активности фагоцитарного звена иммунитета, а именно, поглотительной и переваривающей активности нейтрофилов.
Показания к применению
Все виды иммунопатологии. Первичные и вторичные иммунодефицитные болезни, аллергические и аутоиммунные заболевания.
Иммунологический мониторинг населения, проживающего в экологически неблагоприятных регионах.
Контроль за иммунотерапией заболеваний, состоянием иммунитета после противоопухолевой химио и лучевой терапии.
Разработка и проведение доклинических и клинических испытаний иммуномодуляторов.
Перечень необходимого оборудования:
- Центрифуга (1000 об /мин).
- Камера Горяева или Солар.
- Стеклянные центрифужные пробирки 10 мл (100 шт.).
- Термостат.
- Автоматические дозаторы 20 – 200 мкл.
- Микроскоп с иммерсионным увеличением.
- Предметные стёкла (50 шт.)
Реактивы.
- Физиологический раствор хлорида натрия на фосфатном буфере (ФСБ) рН 7,2 или раствор Хенкса.
- Культура Candida albicans. Метиленовый синий. Азур. Эозин
Описание технологии использования метода
Подготовка Candida albicans
Готовят рабочую взвесь отмытых кандид (5.107 клеток в 1 мл). Оценивают жизнеспособность кандид и используют только суспензию содержащую не менее 96% живых Candida albicans. Для этого смешивают 0,05 мл суспензии кандид и 0,1 мл краски (смесь равных объемов 0,2% раствора водного эозина и 0,1% метиленового синего на дистиллированной воде), через 10 минут взвесь клеток центрифугируют при 1000 об/мин 10 минут на центрифуге ОПН-3, надосадочную жидкость отсасывают, а из осадка делают мазок, высушивают и подсчитывают при световой микроскопии 200 кандид. Оценивают процент живых, имеющих легкое розовое окрашивание и неживых, окрашенных синькой, дрожжевых клеток.
Подготовка суспензии лейкоцитов больного
Утром, натощак, берут 5-10 мл крови из вены в пробирку с гепарином (20 ед. на 1 мл крови). Кровь отстаивают в пробирке в течение 1 часа, до момента четкого отделения эритроцитов от лейкоцитов. Кончик пипетки опускают близко к осевшим эритроцитам и вращательным движением пипетки поднимают осевшие эритроциты, до окрашивания плазмы в легкий красный цвет (смесь эритроцитов с лейкоцитами предотвращает агрегацию лейкоцитов и облегчает подсчет показателей фагоцитоза) и забирают по 0,1 мл такой плазмы на каждую пробу. Количество фагоцитов в методе не стандартизируется, а берется их реальное содержание в плазме через 1 час отстаивания.
Оценка поглотительной активности нейтрофилов
Оценивают фагоцитарный индекс (ФИ), фагоцитарное число (ФЧ) и киллинг в % убитых клеток через 30 и 60 минут инкубации. Все пробы дублируют. В каждую пробирку вносят 0,1 мл плазмы исследуемого пациента и добавляют 0,05 мл рабочей взвеси кандид. Пробы инкубируют в термостате 30 и 60 минут при 37С. Затем взвесь клеток центрифугируют 5 минут при 1000 об/мин, отсасывают 0,05 мл надосадочной жидкости, осадок аккуратно ресуспензируют и наносят 0,05 мл в виде капли на край предметного стекла. Затем отполированным краем второго предметного стекла размазывают каплю по стеклу, делая тонкий мазок, высушивают, фиксируют спиртом и окрашивают азур-эозином (по Романовскому) в течение 5-10 минут.
Вычисляют фагоцитарный индекс Гамбургера, для этого при световой микроскопии, под иммерсией подсчитывают процент фагоцитов имеющих поглощённые кандиды.
Находят фагоцитарное число Райта (среднее число фагоцитированных кандид на один фагоцит): подсчитывают количество кандид в этих фагоцитах и делят на количество этих фагоцитов. При исследовании этих показателей оценивают 200 нейтрофилов.
Оценка киллинга кандид нейтрофилами
К 0,05 мл взвеси клеток оставшихся в пробирке добавляют 0,2 мл дистиллированной воды для лизиса клеток крови. Затем, добавляют 0,5 мл краски (смесь равных объемов 0,2% раствора водного эозина и 0,1% метиленового синего на дистиллированной воде) для окрашивания убитых фагоцитами кандид на 10 мин. Далее взвесь клеток центрифугируют при 1000 об/мин 10 минут, надосадочную жидкость отсасывают, а из осадка делают мазок, высушивают и подсчитывают при световой микроскопии процент убитых фагоцитами, окрашенных синькой, дрожжевых клеток. Живые кандиды имеют лёгкое розоватое окрашивание. Оценивают 200 кандид.
Результаты
Исследование двух показателей фагоцитарного звена системы иммунитета у 30 здоровых людей (доноров) показало, что после 30 минутной инкубации фагоцитарный индекс составил 74,6+-10,3%; фагоцитарное число — 2,7+-0,35; киллинг — 26,3+-4,1%.
В соответствии с этим в норме показатели фагоцитарного звена системы иммунитета с использованием Candida albicans следующие:
- фагоцитарный индекс 65-85% (74,6+-10,3%)
- фагоцитарное число 2,5-3,0 (2,7+-0,35)
- киллинг 22-30% (26,3+-4,1).
Исследование этих показателей в динамике позволяет оценить скорость лизиса поглощённых клеток. Повышение фагоцитарного индекса и фагоцитарного числа при сохранённом киллинге указывает на дефицит переваривания дрожжевых клеток. Уменьшение фагоцитарного индекса и фагоцитарного числа через 30 минут указывает на дефицит поглощения. Уменьшение фагоцитарного индекса и фагоцитарного числа может наблюдаться через 60 мину при интенсивном лизисе дрожжевых клеток.
Примечателен факт высокой точности предлагаемого нами метода оценки показателей фагоцитарного звена системы иммунитета. При сравнении результатов полученных нашим методом (фагоцитарный индекс нейтрофилов цельной крови после 30 минутной инкубации 74,6+-10,3%) и результатов с использованием проточного цитофлюориметра (фагоцитарный индекс нейтрофилов цельной крови доноров после 30 минутной инкубации 75+-10%) [4] отмечено абсолютное сходство.
Контакты:
О лаборатории
- Общая информация
- Основные методики
- Образцы бланков-заказов исследований
- Образцы результатов анализов
- Определение наиболее частых аллергенов
Полезная информация
- Тестирование с помощью скрининговых смесей (ImmunoCAP®)
- Перекрёстные аллергены
- Изменение проявлений аллергии с возрастом
- Аллергические риниты
на главную
Источник
Лабораторная оценка нарушений врожденного иммунитета
Функциональная оценка В-лимфоцитов
Определение концентрации иммуноглобулинов в сыворотке крови и других биологических жидкостях является одним из наиболее важных интегральных показателей функциональной полноценности В-лимфоцитов и всей системы регуляции гуморального адаптивного иммунитета.
Традиционно концентрацию сывороточных иммуноглобулинов определяли методом радиальной иммунодиффузии в геле по Манчини.В настоящее время этот метод все еще находит свое применение, предпочтение отдается моноклональным антителам против отдельных антигенных детерминант (эпитопов), характерных для отдельных классов иммуноглобулинов.
Принцип метода Манчинизаключается в том, что образцы исследуемых сывороток помещают в лунки агара, в которых содержатся антитела против IgM, IgG, IgA в стандартной концентрации. Иммуноглобулины, содержащиеся в исследуемой сыворотке, диффундируют в агар и при взаимодействии с соответствующими антителами образуют кольца преципитации. До тех пор, пока в лунке сохраняется избыток антигена, происходит постепенное увеличение диаметра кольца преципитации. Окончательный размер кольца преципитации зависит от концентрации соответствующих иммуноглобулинов. Метод Манчини позволяет определить концентрацию иммуноглобулинов, равную 10 мкг/мл. Ошибка метода составляет 10%.
Для диагностики нарушений врожденного иммунитета обычно определяют фагоцитарную и метаболическую активность нейтрофилов и оценивают состояние системы комплемента.
Наиболее информативными для оценки фагоцитарной системы следует считать фагоцитарный индекс, фагоцитарное число (отражает поглотительную способность нейтрофилов) и индекс бактерицидности (отражает переваривающую способность нейтрофила).
Фагоцитарный индекс (ФИ) – процент клеток, вступивших в фагоцитоз, от общего их числа.
Фагоцитарное число (ФЧ) – среднее число бактерий или частиц латекса, поглощенных в расчете на один нейтрофил.
Также проводятсятесты спонтанного и стимулированного фагоцитоза с использованием частиц латекса. Фагоцитоз с латексом основан на поглощении частиц латекса нейтрофилами (адгезия, захват и полное поглощение).
При проведении спонтанного теста лейкоциты, выделенные из периферической крови, смешивают с суспензией частиц латекса; при проведении теста индуцированного фагоцитоза к полученной смеси добавляют раствор пирогенала. После инкубирования при 370 С в течение 30 минут готовят мазки, а затем в фиксированных и окрашенных по Романовскому-Гимзе мазках подсчитывают процент нейтрофилов, поглотивших латекс.
Тест восстановления нитросинего тетразолия –НСТ-тест позволяет оценить метаболическую активность гранулоцитов крови, выявляет резервные возможности внутриклеточных систем фагоцитов. НСТ-тест основан на восстановлении поглощенного лейкоцитами крови растворимого красителя – нитросинего тетразолия в нерастворимый диформазан черного цвета (внутриядерные включения – глыбки диформазана) под влиянием супероксиданиона, образующегося в НАДФ-Н-оксидазной реакции, инициирующей процесс стимуляции фагоцитоза.
Постановка реакции. На обезжиренное предметное стекло наносят 0,02 мл 0,9% раствора хлорида натрия, 0,02 мл нейтрофильной взвеси и 0,02 мл 0,75% раствора НСТ (нитросинего тетразолия).
В качестве нагрузки используют коммерческий липополисахарид грамотрицательных бактерий E. coli или раствор пирогенала (липополисахарид S. typhi ) в разведении 1:10. На другое обезжиренное стекло наносят 0,02 мл ЛПС, 0,02 мл нейтрофильной взвеси и 0,02 мл 0,75% раствора НСТ. Помещают во влажную камеру на 30 минут. Готовят мазки, высушивают, фиксируют. Окрашивают 0,1% раствором нейтрального красного. Учитывают нейтрофилы, высчитывая процент лейкоцитов с гранулами восстановленного НСТ (диформазан черного цвета).
Источник
Оценка активности фагоцитоза
ФЧ – фагоцитарное число (фагоцитарная активность) – это % профагоцитировавших клеток на 100 нейтрофилов
ФИ – фагоцитарный индекс – это среднее число бактерий в одном фагоците
Опсоно-фагоцитарный индекс – это соотношение фагоцитарного индекса иммунной сыворотки к фагоцитарному индексу нормальной сыворотки
Оценка миграционной активности фагоцитов
· Реакция направленного хемотаксиса
· РТМЛ (реакция торможения миграции лейкоцитов)
Оценка завершенности фагоцитоза
· Подращивание бактериально-лейкоцитарной смеси
· НСТ-тест (наличие активных форм кислорода) – взвесь нейтрофилов смешивают с нитросиним тетразолием и подсчитывают затем, после кратковременной инкубации, нейтрофилы с синими гранулами – доля нейтрофилов с синими гранулами служит показателем завершенности фагоцитоза
Комплекс тестов, с помощью которых диагностируются наиболее частые нарушения в иммунной системе:
оценка фагоцитоза:
· определение абсолютного числа нейтрофилов и моноцитов;
· определение интенсивности поглощения микробов фагоцитами;
· определение способности фагоцитов убивать микробы;
· определение интенсивности хемотаксиса фагоцитов и экспрессии молекул адгезии (CDlla, CDllb, CDllc, CD18) на поверхностной мембране нейтрофилов;
оценка В-системы иммунитета:
· определение иммуноглобулинов G, А, М и Е в сыворотке крови;
· процентного и абсолютного количества В-лимфоцитов (CD 19, CD20) в периферической крови.
Их определение — главный метод диагностики всех форм иммунодефицитов, связанных с биосинтезом антител, которые проявляются прежде всего в виде длительно протекающих, рецидивирующих инфекций респираторного тракта, хронических синуситов, отитов и др. В зависимости от формы иммунодефицита у таких больных могут наблюдаться диарея, лямблиоз, кожные поражения, злокачественные новообразования. Дефицит IgA часто ассоциируется с аутоиммунными и аллергическими заболеваниями. В последнем случае нередко повышен уровень IgE.
При оценке В-системы иммунитета рекомендовано определение как числа В-лимфоцитов, так и уровня иммуноглобулинов, что позволяет исследовать В-систему иммунитета как с количественной, так и с функциональной стороны.
Определение количества иммуноглобулинов позволяет судить не только о нормальном функционировании В-, но и косвенно о Т-системе иммунитета. Повышенный уровень IgE может свидетельствовать об усилении синтеза интерлейкина-4 и, следовательно, об усилении функции Т-хелперов.
Оценка количества иммуноглобулинов включает определение:
—субклассов иммуноглобулинов, особенно IgG;
—секреторного IgA;
—соотношения каппа- и лямбда-цепей;
—специфических антител к белковым и полисаха-ридным антигенам;
—способности лимфоцитов давать пролиферативный ответ на В-(стафилококк, липополисахарид) и Т-, В-(митоген лаконоса) митогены.
Определение содержания субклассов IgG представляет диагностическую ценность, так как при нормальном уровне IgG могут быть дефициты по субклассам иммуноглобулинов.
Важное функциональное свойство иммуноглобулинов — опсонизирующая активность. Выполнение нейтрофилом этой функции зависит от опсонизирующей активности сыворотки крови, где иммуноглобулинам и комплементу принадлежит ведущая роль.
Оценка Т-системы иммунитета:
Тесты 1-го уровня для оценки T-системы
· определение общего числа лимфоцитов;
· определение процентного и абсолютного числа зрелых Т-лимфоцитов (CD3) и двух основных их субпопуляций: хелперов/индукторов (CD4) и киллеров/супрессоров (CD8);
· определение пролиферативного ответа на основные Т-митогены: фитогемагглютинин и конканавалин А.
Источник
При
оценке фагоцитоза
к скрининговым тестам относят определение
количества нейтрофилов, изучение их
морфологии и образования активных форм
кислорода, к развернутым- определение
киллинга микробов, лизосомальных
ферментов, цитокинов.
Существующие
методы оценки иммунного статуса постоянно
совершенствуются, однако есть ряд общих
правил, которых необходимо придерживаться
при оценке иммунограмм
:
—
комплексный анализ, а не оценка одного
показателя;
—
анализ в комплексе с клиническими и
анамнестическими данными;
—
оценка резких сдвигов показателей (не
менее 20% от нормы);
—
анализ в динамике;
—
анализ не только (и не столько) абсолютных
данных, а соотношений показателей
(особо- индекс Th/Ts);
—
учет возможных индивидуальных особенностей
(возраст, сопутствующие заболевания) и
колебаний показателей (физиологических
и патологических- прием пищи, физические
нагрузки, время суток, действие стрессоров
и т.д.);
—
учет региональных норм;
—
учет материально- технической базы
лаборатории. На вооружении современной
лаборатории- проточные цитометры и
другое оборудование, которое позволяет
наиболее точно и подробно определить
иммунный статус (лазерная проточная
цитофлюориметрия).
15. Естественные киллеры. Механизмы распознавания и цитолиза клетки мишени. Лабораторные методы определения количества естественных киллеров и их функциональной активности. (прод. №10)
З.
NK-клетки
представляют собой большие гранулированные
лимфоциты, не относящиеся ни к Т- ни к
В-лимфоцитам.
1.
Существуют две субпопуляции NK-клеток.
а.
Циркулирующие
в крови
NK-клетки уничтожают инфицированные
вирусами клетки, на поверхность которых
«сели» антитела (т.е. осуществляют так
называемую антителозависимую
цитотоксичность, о которой пойдет речь
ниже).
б.
Тканевые
NK-клетки
локализуются в слизистых оболочках,
красной пульпе селезенки, в печени
(именно NK-клетки, расположенные в печени,
представляют собой лимфоидный барьер
для крови воротной вены, обеспечивая
формирование иммунологической
толерантности к пищевым антигенам).
2.
NK-клетки осуществляют внеклеточный
киллинг опухолевых и других клеток,
несущих чужеродный антиген (но, в отличие
от цитотоксических лимфоцитов, без
активации антигеном). Механизм
внеклеточного киллинга
обусловлен действием на клетку-мишень
синтезируемых NK-клетками специфических
белков – перфоринов, которые формируют
в оболочке клетки-мишени трансмембранные
каналы (аналогично действию мембранатакующего
комплекса комплемента).
Через
формируемые перфоринами трансмембранные
каналы впрыскиваются гранзимы – белки,
также синтезируемые NK-клетками. Гранзимы
активируют эндонуклеазы, осуществляющие
фрагментацию ДНК. Другими словами,
NK-клетки запускают в клетке-мишени
процесс апоптоза. Разрушение клетки-мишени
происходит также и за счет осмолиза,
что приводит к некрозу.
В
обеспечении видового иммунитета
существенную роль принадлежит Т-
цитотоксическим лимфоцитам (Т- киллерам),
а также главной
системе гистосовместимости
(подробнее- в следующих лекциях).
Т-
киллеры
по представлению антигенов главной
системы гистосовместимости класса 1
распознают любые чужеродные антигены
(включая мутантные, например- раковые
клетки), атакуют и уничтожают их.
Клетки
NK
(naturalkiller—
натуральные киллеры) имеют
важное значение в поддержании генетического
гомеостаза и противоопухолевой защите,
их функции распознавания не зависят от
представления антигенов МНС (major
histocompatibility
complex)
класса 1.
Системы
неспецифической резистентности и
видового иммунитета способствуют
поддержанию структурной и функциональной
целостности организма и являются основой
для формирования приобретенного
(специфического) иммунитета. Стыкуясь
на этом, более высоком уровне, системы
видового и приобретенного иммунитета
образуют единую и наиболее эффективную
систему самозащиты организма от всего
чужеродного.
Источник